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植物组织培养可以分为四个阶段：
（1）建立无菌体系，即外植体及培养基的消毒、接种，获得愈伤组织或器官。
（2）进行增殖，不断分化产生新的植株，或直接产生不定芽及胚状体，也可以根据需要反复进行继代培养，以达到大量繁殖的目的。
（3）将植株转移进行生根培养，可以转入生根培养基，也可以直接切取进行扦插生根。
（4）试管苗过渡，即试管苗出瓶后进行一定时间对外界环境的适应过程。
什么是组培脱毒技术？
植物组织培养有什么意义
并可以利用各种培养条件影响它们的发育进程(1)植物组织培养意义。
③组织培养可快速繁殖植物种苗 目前组织培养在无性系的快速繁殖。
②组织培养是开展生物工程的基本技术 各种基因转移和基因重组技术是组织培养基础上建应的，可以在不受植株体其它部分干拢下研究被培养部分生长和分化的规律、药用植物和次生物质的工业化生产等方面的应用已十分广泛、人工种子和种质保存、无病毒种苗培育、新品种的选育：
①组织培养是研究植物生长和分化规律的重要手段 组织培养是在人工控制条件下培养外植体再生器官或植株的技术
植物组织培养有哪些重要意义扩大了植物繁殖途径，便于无性微繁体系的保存，对珍惜濒危物种保护有重大意义，有利于种子繁殖率低的植物的保护，便于工厂化生产等
在植物组织培养中超低温保存有什么意义?减缓细胞分裂的速度吧，控制在休眠期
植物细胞培养与植物组织培养有什么区别一是,植物组织培养是用很多细胞,而植物细胞培养使用一个细胞.
二是,植物组织培养可以得到与母本的植株,而植物细胞培养即可以得到与母本的植株也可以得到单倍体植株(譬如说花粉培养）.
植物组织培养与植物离体培养有什么区别？上面会打的差不多了。不过我记不清了，组织培养应该还可以发育成除胚状体意外的一种而不是直接的发育成幼苗！
植物组织培养与细胞培养有什么区别
植物组培和动物细胞培养的培养基最大区别是前者的培养基为固体培养基，而后者是液体培养基。另外还有明显的区别是，植物组培的培养基中特有植物激素，动物细胞培养的培养基中特有动物血清。
植物组织培养和植物细胞培养有什么区别？侧重点不同，组织培养是把细胞或组织培养成完整个体。细胞培养是使细胞增殖，以获得细胞代谢产物。
植物组织培养与动物组织培养基有什么区别培养基不同：植物细胞（固体培养基），动物细胞（液体培养基）
培养基的成分不同：动物细胞培养必须利用动物血清，植物组织培养则不需要。?原理不同：植物组织培养的原理为植物细胞的全能性，动物细胞培养的原理为细胞的增殖。
微型繁殖和植物组织培养有什么不同？植物的微型繁殖技术是指快速繁殖优良品种的植物组织培养技术，也叫快速繁殖技术。
植物的组织培养是根据植物细胞具有全能性这个理论，近几十年来发展起来的一项无性繁殖的新技术。植物的组织培养广义又叫离体培养，指从植物体分离出符合需要的组织、器官或细胞，原生质体等，通过无菌操作，在无菌条件下接种在含有各种营养物质及植物激素的培养基上进行培养以获得再生的完整植株或生产具有经济价值的其他产品的技术。狭义是指组培指用植物各部分组织，如形成层、薄壁组织、叶肉组织、胚乳等进行培养获得再生植株，也指在培养过程中从各器官上产生愈伤组织的培养，愈伤组织再经过再分化形成再生植物。
补充：
微型繁殖技术有短枝扦插、芽增殖、原球茎、器官分化和胚状体发生。适用的品种多，据文献报道组培成功的植物种类达1500多种，正真能产业化生产的有几百种。特别适用于不能通过扦插繁殖植物的快速繁殖，如兰花、百合、非洲菊等等。虽然木本植物的组培比草本要难，通过科研人员的努力，已在杨树、桉树许多植物上获得成功。
植物组织培养即植物无菌培养技术，又称离体培养，是根据植物细胞具有全能性的理论，利用植物体离体的器官(如根、茎、叶、茎尖、花、果实等）、组织（如形成层、表皮、皮层、髓部细胞、胚乳等）或细胞（如大孢子、小孢子、体细胞等）以及原生质体,在无菌和适宜的人工培养基及温度等人工条件下，能诱导出愈伤组织、不定芽、不定根，最后形成完整的植株的学科。
植物组织培养 污染率污染的来源。植物组培污染主要是霉菌、细菌和酵母菌引起的污染。霉菌和酵母菌在培养条件下生长快，很容易观察到，而细菌潜伏期长，植物组织一般不表现症状，所以很难在前期和肉眼观察到[1]。国外有关学者认为细菌污染的来源主要有三个：一是材料内部灭菌处理不好，这样造成的污染占污染总数的1/3～1/2。二是在正常的灭菌的条件下，内生菌能够存活，这样的污染占污染源的1/4。三是来自寄生植物的污染占1/4～1/2。同时认为有些植物的昆虫和螨虫的体表带有霉菌的孢子和细菌，在九、十月份是重要的污染源，因多种植物昆虫处在大量繁殖阶段，此时大量昆虫造成的污染源最易造成组培污染的严重发生。近六年来，我们通过对猕猴桃、樱桃、托柄菝葜及大花非洲菊初级培养污染的研究中发现，高温、多雨的环境更有利于污染的发生，而且随着植物材料年龄的增长，植物材料的健康状况不断恶化，组培污染也会更加严重。另外，外植体的状况，环境条件和操作过程也是引起污染的主要原因。
virus-free tissue culture technique
魏宁生
用组织培养技术，从带毒植物的茎尖、芽等组织获得无毒再生植株的方法。在脱毒过程中主要选用茎尖、芽等生长点作为外植体（explant），故又称为茎尖脱毒（virus-free meristem culture）。组培脱毒是在组培培养学和病毒学相结合的基础上发展的技术。
简史
1922年美国罗宾斯（J.A.Robins）等用豌豆、玉米和棉花根尖进行组织培养首次获得完整植株。1943年美国怀特（P.R.White）发现在感染烟草花叶病毒植株生长点附近病毒的浓度很低，甚至没有病毒。1952年摩瑞尔（G.M.Morel）等用感病的大丽菊茎尖分生组织，第一次培养得到脱毒的大丽菊，标志着组培脱毒研究工作的开始。以后相继进行了马铃薯、菊花、兰花、百合、草莓、矮牵牛、鸢尾等茎尖脱毒的研究，并获得成功。中国最早的组培工作是李继侗等1933年用银杏胚培养成植株。其后，罗宗洛、崔澂、罗士韦等在玉米、烟草等作物上进行了幼胚、根尖和茎尖组织的培养。吉林农业大学等单位率先开展了茎尖脱毒工作，1976年中科院等单位用茎尖脱毒技术获得了无毒马铃薯。目前已得到了菊花、大蒜、百合、石竹等植物的无毒植株（种球）。利用茎尖脱毒技术获得无毒种球（苗），已成为防治病毒病的一项有效途径。
组培脱毒法和程序
即茎尖脱毒法。主要是茎尖的选取和消毒、培养基制备等。
茎尖的选取和消毒
一般选用茎尖和芽，若为休眠鳞茎、球茎需先进行低温处理待发芽后再取材。材料用75%酒精表面消毒，再用0.1%升汞溶液消毒，经无菌水冲洗2～3次置于解剖镜下切取茎尖0.1～1.0毫米的切段，移植到愈伤组织培养基上培养，所有操作均在无菌条件下进行。
培养基的制备
用于组织培养的培养基有30种以上，但都是在费佛培养基的基本配方上加以改进，并加入一些活性物质发展而来的。目前应用的大多数培养基是为培养愈伤组织设计的，所以对茎尖培养并不完全适合。摩瑞尔农事培养基等适用于生长点培养，其主要成分为硝酸钙（Ca（NO3）2）、硝酸钾（KNO3）、硫酸镁（MgSO4）、硫酸亚铁（FeSO4）、肌醇、生物素等，可用于大丽菊、菊花、百合等茎尖脱毒培养。大量的研究结果表明：培养基附加2，4-D、激动素（KT）可有效地使许多外植体产生愈伤组织；当提供1毫克/升激动素（KT）和0.3毫克/升吲哚乙酸（IAA）时，能用于草本植物的茎尖培养，建立脱毒植株繁殖系。一般激动素/生长素的比例大，有利于芽的发生；生长素/激动素比例大，则有利于根的发生。
组培的条件
要求光照强度在1500～2000勒克斯，每日光照10～12小时，温度为22～25℃。
脱毒效果的鉴定
主要有鉴定植物法和抗血清鉴定法。
植物鉴定法
利用病毒在指示植物上产生的特有症状来鉴定病毒，一般采用枯斑反应寄主。
抗血清鉴定法
常用的是琼脂双扩散法和免疫电镜法。琼脂双扩散法测定过程是先将热溶的精制琼脂溶液倒入培养皿中，待冷却形成一层凝胶后在胶上打孔，孔的直径为0.3～0.4厘米，两孔间距约0.5厘米，然后将样品（抗原）和抗血清（抗体）加入不同位置的孔中进行扩散，观察有无沉淀带。免疫电镜法根据抗体和抗原在铜网上的结合方式又分为两类：聚焦法是在铜网上先加抗血清，固定1小时后再加待测样品，用磷酸缓冲液冲洗并负染待干燥后观察。修饰法是先加病毒样品，再加抗体，负染观察。另一种血清检验方法是斑点免疫结合测定法，此法是对酶联免疫吸附法（ELISA）的改进，使之更为方便、实用。具体方法是用华特曼1号滤纸打成直径为7毫米的圆片来代替微量固定反应板，将测样分次滴在小片上并使之干燥后，放入直径为10～15毫米的圆筒状小瓶中加入抗血清，在旋转振荡器上摇动0.5～1小时。然后用TBS洗涤。再加入A蛋白—过氧化物酶于小瓶中，连同纸片一块摇动15～30分钟，再洗涤。最后加入底物——氯萘酚并摇动10分钟即可。如果是正反应，在滤纸片中央呈现深蓝色，负反应仅呈现均匀的淡蓝色。
经鉴定获得无毒植株后需要复壮培养和快速繁殖再进入推广应用。在生产环节中应尽量避免病毒的再度感染，有个别植株感病时应及时拔除。
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